如何正确制备细胞周期实验样品?

细胞周期分析是分子生物学常用的实验方法,尤其在抗肿瘤药物研究上使用普遍。但细节处理不好,做得再多也做不出正确的、好看的分布图。

今天来策下如何准确制备细胞周期测试的样品,真的是百试百灵哦!

简单介绍下实验原理

碘化丙啶(PI)是一种核酸染料,可以与 DNA 和 RNA 结合,但其不能透过正常的细胞膜,所以对活细胞无染色作用。可通过冷乙醇或其他破膜剂的作用,使细胞膜通透性增加。

PI 进入细胞内后,选择性地与核酸结合,RNase 裂解 RNA 后,细胞内染料的荧光量与细胞核内的 DNA 含量成正比。

通过流式细胞仪检测单个细胞荧光强度得到相对 DNA 含量,根据各个时相 DNA 含量不同,将细胞分为不同的周期。

具体操作流程及注意事项

将对数期的细胞接种于 6 孔板中(2×105 个 / 孔,根据细胞大小、增值速度适当调整),每孔加 2 ml 培养基培养。

细胞贴壁后(根据细胞具体情况),去除培养基,分别加入培养基配置的不同浓度药物 1 ml 孵育(不使用造成细胞大量死亡的药物浓度和孵育时间)。

药物作用结束后,收集培养液,1500 rpm,离心 4 min。一定要一并收集漂浮的死细胞,不然会严重影响结果。

消化收取贴壁细胞,吹打过程一应要轻柔充分,避免细胞受损、细胞黏连;离心转速为 2000 rpm,离心 4 min(离心转速不要超过 2000 rpm,也可以采用 1000 rpm,离心 5 min),PBS 洗 3 遍,以去除培养基、药物残留及细胞碎片。合并培养液和贴壁细胞。

注意!注意!!注意!!!

整个过程一定要尽量降低操作对细胞的损伤,要吹打轻柔,减少离心次数,转速不要超过 2000 rpm。

消化细胞时要保证细胞吹散,不要有细胞黏连,一旦这一步骤没有消化充分,后面很难再将细胞吹散,后果严重。

测试时细胞浓度一定要根据流式细胞仪的检测范围,不然可能会影响准确度。

今天就策到这里,下次告诉大家 FlowJo 软件分析细胞周期相分布时的注意事项,因为作者发现有 SCI 文章的流式周期分布图,明显是造假出来的,哈哈哈哈……

 

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